banner

Блог

Aug 31, 2023

Структура, катализ, транспорт хитина и избирательное ингибирование хитинсинтазы.

Nature Communications, том 14, номер статьи: 4776 (2023) Цитировать эту статью

Доступы 1927 г.

13 Альтметрика

Подробности о метриках

Хитин является одним из наиболее распространенных природных биополимеров и служит важнейшим структурным компонентом внеклеточного матрикса, включая клеточные стенки грибов и экзоскелеты насекомых. Хитин, являющийся линейным полимером β-(1,4)-связанного N-ацетилглюкозамина, синтезируется хитинсинтазами, которые признаны мишенями для противогрибковых и противонасекомых препаратов. В этом исследовании мы определили семь различных криоэлектронных микроскопических структур хитинсинтазы Saccharomyces cerevisiae в отсутствие и в присутствии гликозильного донора, акцептора, продукта или пептидилнуклеозидных ингибиторов. В сочетании с функциональным анализом эти структуры показывают, как донорные и акцепторные субстраты связываются в активном центре, как гидролиз субстрата приводит к самовсасыванию, как открывается трансмембранный канал, проводящий хитин, и как ингибиторы пептидилнуклеозидов ингибируют хитинсинтазу. Наша работа обеспечивает структурную основу для понимания функции и ингибирования хитинсинтазы.

Хитин является вторым по распространенности природным полисахаридом на Земле после целлюлозы, и каждый год живые организмы производят около 100 миллиардов тонн хитина1. Хитин является основным компонентом клеточных стенок грибов, экзоскелета ракообразных и насекомых и играет важную роль в размножении, росте и развитии этих организмов2. Хитин представляет собой длинноцепочечный полимер β-(1,4)-связанного N-ацетилглюкозамина (GlcNAc) и синтезируется хитинсинтазой в плазматической мембране3,4. Хитинсинтаза катализирует образование β(1 → 4) гликозидных связей в хитине, используя УДФ-активируемый GlcNAc (UDP-GlcNAc) в качестве донора сахара и одновременно транспортируя полисахаридный продукт наружу через мембрану (рис. 1а).

Синтез и схема транспорта хитина Chs1. b Анализ UDP-Glo ​​гликозилтрансферазы in vitro с очищенным Chs1 в буфере с (WT) или без (noGlcNAc) GlcNAc. Анализ в условиях WT также проводили с ЭДТА, трипсином, NikkoZ или PolyB. В качестве контроля использовали реакцию без Chs1. Точки данных представляют собой среднее значение ± SD в трех экземплярах. Исходные данные предоставляются в виде файла исходных данных. c Анализ синтеза хитина in vitro с очищенным Chs1 в буфере с (WT) или без (noGlcNAc) GlcNAc. Анализ в условиях WT также проводили с ЭДТА и трипсином. В качестве контроля использовали реакцию без Chs1. Точки данных представляют собой среднее значение ± SD в трех экземплярах. Исходные данные предоставляются в виде файла исходных данных. г Крио-ЭМ-карта и атомная модель димера апо Chs1. e Мультяшное изображение мономера Chs1. Полипептид показан радугой от N-конца к C-концу. Предполагаемый активный сайт выделен оранжевым кружком. Предполагаемый канал транспортировки хитина обозначен фиолетовой стрелкой. f Карикатурная топология мономера Chs1. g Карта домена Chs1. Помечены основные домены и мотивы. Невидимая N-концевая область выделена белым цветом.

У Saccharomyces cerevisiae хитинсинтаза в основном кодируется CHS1, CHS2 или CHS3. Одновременный нокаут всех трех генов летален для дрожжей5. ScChs1 и ScChs2 принадлежат к одному и тому же семейству хитинсинтаз, которое содержит разное количество трансмембранных спиралей от ScChs36. ScChs1 и ScChs2 ответственны за синтез первичной перегородки и связаны с разделением клеток в цитокинезе, тогда как ScChs3 отвечает за образование хитина в зачаточном кольце и хитина, диспергированного в клеточной стенке5,7,8,9,10,11. Предыдущие исследования показали, что Chs1 находится в основном в форме зимогена и может активироваться путем протеолиза3,12,13.

Хитинсинтаза принадлежит к семейству инвертирующих гликозилтрансфераз 2, содержащих складку GT-A, которое также включает гиалуронан и целлюлозосинтазы14,15. В последние годы сообщалось о структурах гиалуроновой и целлюлозосинтаз, что дало структурное представление об их рабочих механизмах16,17,18,19,20,21. Однако структура хитинсинтазы не определена, что затрудняет механистическое понимание каталитических и хитинтранспортных механизмов хитинсинтазы.

2000 cells were counted and calculated using w303 and chs1Δ as negative and positive controls. The phenotype of the cell string is an indicator of how much Chs1’s function is disrupted in vivo. d Structural comparison between UDP-GlcNAc donor-bound Chs1 (purple) and primed UDP+GlcNAc-bound Chs1 (cyan) by aligning their TMs. The orange arrow marks the shift of the GT domain and nucleotide toward the membrane from the donor-bound state to the primed state. The active site is highlighted by a blue rectangle. The sugar donor is highlighted by a yellow rectangle. e Close-up view of the active site of primed Chs1 (cyan) in complex with UDP, GlcNAc, and two Mg2+ ions (lime). This is enlargement of the blue rectangle in (d) viewed from left. Substrates and key residues are shown in stick representation. f Enlargement of the yellow rectangle in (d) viewed from back. The UDP (cyan) and Mg2+ (lime) of primed Chs1, and UDP-GlcNAc (purple) and Mg2+ (purple) of the donor-bound Chs1 are shown. α-, β-phosphates are labeled, highlighting a 180° rotation of the β-phosphate from UDP-GlcNAc to UDP./p>4 Å. This is probably partially because the conserved metal coordinate DxD motif in other metal-dependent GT-A fold glycosyltransferases33 is replaced by a DAG motif (residues 602–604) in Chs1 (Fig. 3a, Supplementary Fig. 14). Such architecture of Mg2+ enables the movement of β-phosphate./p>

ДЕЛИТЬСЯ